1．猪房室传导阻滞模型制作

为制作猪房室传导阻滞模型，我们使用小型猪作为实验对象，并在术前让其禁食12小时。接着，我们使用戊巴比妥钠进行全身麻醉(30mg/kg腹腔注射)，将气管插管并采用呼吸机进行辅助呼吸。我们还使用肢体导联进行连线，并对其进行持续心电监护。

制作猪房室传导阻滞模型主要有两种方法：化学消融法和射频消融法。化学消融法需要在右侧第3肋间小切口开胸，并将电极固定于左心室心外膜行保护性临时起搏(频率设定为50次/分)。随后，我们在房室交界区(房室沟)注射37％的甲醛或99％的无水乙醇1～1.5ml。观察30分钟后，如未恢复房室传导，则视为达到手术终点。最后逐层关胸，留置胸腔闭式引流。

射频消融法需要行右股静脉切开术，置入8F动脉鞘管和7F静脉鞘管，分别送入临时起搏电极至右心室行保护性临时起搏(频率设定为50次/分)，送入可操控消融电极导管。在Koch三角处标测到清晰稳定的希氏束电位后即放电消融，输出功率为50W，放电时间为30秒。若30秒内出现房室传导阻滞，再巩固消融30秒。如30秒内出现不完全性房室传导阻滞或加速性交界区心律，则继续消融直到出现房室传导阻滞后再巩固消融30秒。体表心电图和腔内心电图显示房室分离视为达到手术终点。

虽然化学消融方法技术要求不高，但由于房室结定位比较困难，注射化学物质对心肌刺激会引起心律失常增加实验难度，且术中术后的并发症(感染、大出血等)和死亡率高于射频消融组。射频消融术较化学消融法简便、安全且并发症少，有条件的实验室应优先使用射频消融术建立缓慢型心律失常模型。

2．犬房室传导阻滞模型制作

为制作犬房室传导阻滞模型，我们使用雄性比格犬作为实验对象。在术前，我们需要让其禁食12小时。在以7～10mg/kg异丙酚麻醉诱导前，我们还需肌肉注射0.2mg/kg布托啡诺和0.01mg/kg乙酰丙嗪。接着，我们使用气管插管呼吸机吸入异氟烷(1.5％～2％)和氧气的混合气体，进行持续全身麻醉。然后我们切开股静脉，置入8F动脉鞘管和7F静脉鞘管，在X线透视下分别送入心内膜临时起搏电极至右心室行保护性临时起搏(频率设定为50次/分)，送入消融电极导管。

制作犬房室传导阻滞模型的方法为射频消融法。我们先使用消融电极导管记录最佳希氏束电图判断希氏束位置，然后向后转动导管到希氏束电位刚好消失处，以温控模式65℃放电消融30秒。出现短瞬交界区心动过速后，大约20秒钟即可形成完全性房室传导阻滞。巩固放电1～3次，并观察30分钟，如房室传导未恢复，则视为达到手术终点。

通过以上方法，我们可以较为安全、简便的制作出猪房室传导阻滞模型和犬房室传导阻滞模型，为心脏疾病的研究提供了重要的实验手段。

北检院部分仪器展示