1.造模材料：本次实验选用雄性新西兰大白兔作为模型动物，体重为（2.5±0.3）kg。在实验过程中使用药物包括阿托品、地西泮、乌拉坦、青霉素等。同时使用BL-410生物机能实验系统和双极电凝器等器械。
2.造模方法：在地西泮2mg加阿托品0.1mg肌内注射后5分钟，使用20％的乌拉坦1g/kg自兔耳缘静脉注射麻醉。将兔子固定在动物手术板上，并进行常规备皮、消毒、铺巾等操作。然后在胸骨左侧0.5cm处进行纵向切口，离断胸骨与左3、4肋交界处，取出第3肋，小心剪开心包膜，清楚地观察到左心耳，左冠状动脉从其后下缘发出。以左心耳下约3mm处为起点，以双极电凝器由远及近电凝，电凝长度为血管直径的4倍，最终达到局部血液阻断的效果。此时血管由红到白，由白到黄皱缩但又不焦脆为度，电凝局部区域变灰白，心电图（electrocardiogram, ECG）出现ST段上抬，初步判断模型制作成功。使用0号丝线缝合心包膜，生理盐水冲洗并吸干后依次缝合肌肉、皮肤。术后连续7天予青霉素抗感染。
3.造模原理：模型的制作基于电凝阻断冠状动脉血流的原理，从而导致心肌梗死的出现。
4.造模后的病理变化：取梗死后的6小时、3天、1周、3周心脏组织，在常规HE染色下进行观察。在6小时时，梗死边缘心肌纤维呈波浪状肿胀，部分核碎裂、核溶解、消失，肌浆均质呈红染色，间质出现水肿，还有少量中性粒细胞浸润，呈早期凝固性坏死改变。在3天时，梗死灶外周血管充血，有较多中性粒细胞浸润，并伴随液化性肌细胞的溶解。镜下可见局灶心肌纤维溶解，空泡变性，形成一个个扩张的内膜空管。在1周时，梗死边缘区出现肉芽组织，并向梗死灶内生长。在3周的组织标本中，梗死局部纤维瘢痕形成。
5.注意事项：手术器械必须严格消毒，以防止手术感染的出现。手术创伤应尽可能小，进行严格无菌操作。
